免疫熒光標記法
1) 制備單細胞懸液；
2) 細胞計數，取出 1× 106 個細胞于試管中；
3) 用臺盼藍染色計活細胞數，要求活細胞數 >90 ～ 95%；
4) 在試管中加入一抗，（劑量按照說明書的要求），孵育 30 ～ 60 分鐘；
5) PBS 洗滌 1 ～ 2 次， 1500rpm，離心 3 分鐘，棄上清；
7) PBS 洗一次， 1500rpm，離心 3 分鐘，棄上清;
8) 加 300μl PBS，上機檢測(若不能及時上機檢測， 可加 1ml 1%多聚甲醛固 定，可放置 1 周)。
① ~ ③同間接標記法
④在試管中加入熒光標記的抗體，混勻，孵育 30 分鐘；
⑤用 PBS 洗 2 次， 1500rpm，離心 3 分鐘，棄上清;
1) 取已制備好的單細胞懸液，用 1 ～ 3%的多聚甲醛固定 30 分鐘（也可 4℃ 保存過夜 ）；
3) 細胞膜打孔，加入 0.1%皂素 200μl，室溫 10 分鐘；
5) 加入第一抗體， 室溫 30 ～ 60 分鐘，或 4℃過夜， 同時須設陰性對照或同 型對照管；
6) 用 PBS 洗滌兩次；
7) 加入二抗（熒光標記的抗體）室溫 20 分鐘，避光；
8) 用 PBS 洗滌 1 ～ 2 次，棄上清；
9) 重懸細胞于 500μlPBS 中，上機檢測。
加入熒光素標記好的抗體，避光 30 分鐘（同時做同型對照管）；
用 PBS 洗滌1~2次，棄上清；
加 300μl PBS 上機檢測。
細胞膜上及細胞內雙標記法（ 直標法）
1) 取出已制備好的未固定的單細胞懸液 1× 10 6 個細胞于試管中； 2) 用 PBS 洗滌兩次；
3) 加入用熒光素標記的抗體來標記細胞膜上的抗原， 同時加上陰性對照管， 室溫孵育 20 分鐘；
4) 在試管中加入 1％～3％多聚甲醛 1ml，固定 30 分鐘；
5) PBS 洗滌兩次 1500rpm 3 分鐘，棄上清;
6) 打孔，加入 0.1％皂素 200μl 室溫 10 分鐘;
7) 用 PBS 洗滌兩次，棄上清;
8) 加入用熒光素標記的抗體，標記膜內的抗原（標記膜內的抗體的熒光素
的顏色與膜上標記的熒光素的顏色務必不相同）室溫 20 分鐘孵育;
9) 用 PBS 洗一遍棄上清；
10) 用 300μlPBS 重懸細胞，上機檢測
五、流式細胞術中的幾點注意事項：
在流式細胞術中所測得的量都是相對值，不是絕對值。如需知道絕對值
時必須設置對照組樣品。對照組樣品包括有陰性對照和陽性對照。
2 在實驗過程中，如做間接標記法，可設置與一抗無關的實驗，即在 實驗中不加一抗而只加上帶有熒光標記的第二抗體作為陰性對照
管，作為陰性對照。
2 在實驗過程中，假設做直接標記法，可設置理論上的陰性細胞作為 陰性對照管， 實驗過程及步驟與實驗組務必相同。（做間接標記法時 ，
同樣也可同時設置“ 陰性細胞" 的陰性對照管作為陰性對照。
2 在實驗過程中，假設做直接標記法，可將實驗組細胞，取一管，加
上與實驗抗體所標記的熒光顏色相同的同型對照來作為陰性對照。
（2）、陽性對照的設置：
在實驗過程中如涉及到表達缺失或減少的實驗，應設置陽性對照組，其設置方法與陰性對照設置相同。
1) 在實驗過程中， 在保證實驗的科學性和準確性的基礎上， 應盡量減少實驗工 序和過程。由于間接標記法的工序多，實驗過程長， 如再加之操作的不熟練 ， 細胞更容易丟失和受損， 而造成實驗結果的誤差。因此，在條件允許的范圍 內， 建議盡量做直接標記法而不去做間接標記法， 以保證實驗的真實性和準 確性。
2) 建議送檢細胞一定要足夠量， 一般要求 1× 106 個細胞。不要過少。因為，如 細胞太少檢測時樣本流量相對會增大從而影響變異系數， 結果也不可信。 細 胞量也不宜過多， 因細胞量太多加入的抗體或染料相對不足， 結果也由此受
影響。
3) 同一種細胞需同時做雙標記時， 須做雙標記的同型對照， 且兩種抗體所標記 的熒光顏色務必不同。
