大腸桿菌感受態細胞的制備及質粒轉化
一、實驗目的
通過本實驗，掌握大腸桿菌感受態細胞的制備及轉化的方法和技術。獲得感受態細胞；制備含有目的片段的陽性克隆。
二、實驗原理
轉化(Transformation)是將外源DNA分子引入受體細胞，使之獲得新的遺傳性狀的一種手段，它是微生物遺傳、分子遺傳、基因工程等研究領域的基本實驗技術。
轉化過程所用的受體細胞一般是限制修飾系統缺陷的變異株，即不含限制性內切酶和甲基化酶的突變體(Rˉ，Mˉ)，它可以容忍外源DNA分子進入體內并穩定地遺傳給后代。受體細胞經過一些特殊方法(如電擊法，CaCl2，RbCl (KCl) 等化學試劑法的處理后，細胞膜的通透性發生了暫時性的改變，成為能允許外源DNA分子進入的感受態細胞 (Compenent cells)。進入受體細胞的DNA分子通過復制，表達實現遺傳信息的轉移，使受體細胞出現新的遺傳性狀。將經過轉化后的細胞在篩選培養基中培養，即可篩選出轉化子(Transformant，即帶有異源DNA分子的受體細胞)。CaCl2 法簡便易行，且其轉化效率全可以滿足一般實驗的要求，制備出的感受態細胞暫時不用時，可加入占總體積15％的無菌甘油于-70℃保存(半年)，因此CaCl2法使用更廣泛。
轉化率的計算：
統計培養皿中的轉化子數，轉化后在抗生素的平板上長出的菌落即為轉化子。
轉化子總數=菌落數×稀釋倍數（轉化反應原液總體積 / 涂板菌液體積）
轉化頻率（轉化子個數/每μg質粒DNA）= 對照2轉化子總數 / 質粒DNA加入量（μg）
感受態細胞總數= 對照1菌落數×稀釋倍數
感受態細胞轉化效率= 轉化子總數 / 感受態細胞總數
為了提高轉化效率，實驗中要考慮以下幾個重要因素：
1. 細胞生長狀態和密度: 不要用經過多次轉接或儲于４℃的培養菌，最好從-70℃或-20℃甘油保存的菌種中直接轉接用于制備感受態細胞的菌液。細胞生長密度以剛進入對數生長期時為好，可通過監測培養液的OD600 來控制。密度過高或不足均會影響轉化效率。
2. 質粒的質量和濃度: 用于轉化的質粒DNA應主要是超螺旋態DNA(cccDNA)。轉化效率與外源DNA的濃度在一定范圍內成正比，但當加入的外源DNA的量過多或體積過大時，轉化效率就會降低。1ng的cccDNA即可使50μL的感受態細胞達到飽和。一般情況下，DNA溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5％。
3. 試劑的質量: 所用的試劑，如CaCl2 等均需是最高純度的(GR.或AR.)，并用超純水配制，最好分裝保存于干燥的冷暗處。
4. 防止雜菌和雜DNA的污染：整個操作過程均應在無菌條件下進行，所用器皿，如離心管，tip頭等最好是新的，并經高壓滅菌處理，所有的試劑都要滅菌，且注意防止被其它試劑、DNA酶或雜DNA所污染，否則均會影響轉化效率或雜DNA的轉入，為以后的篩選、鑒定帶來不必要的麻煩。
本實驗以E.coli TOP-10菌株為受體細胞，并用CaCl2處理，使其處于感受態，然后與pUC質粒共保溫，實現轉化。由于pUC質粒帶有氨芐青霉素抗性基因 (Ampr)，可通過Amp抗性來篩選轉化子。如受體細胞沒有轉入pUC，則在含Amp的培養基上不能生長。能在Amp培養基上生長的受體細胞（轉化子）已導入了pUC。
三、主要試劑
E.coli(Top-10, DH 5a)、CaCl2、無菌水、胰蛋白胨、酵母粉、瓊脂、氨芐青霉素。
四、儀器耗材
控溫搖床(37℃)、冷凍離心機（50mL轉子）、水浴鍋、冰箱（-20℃，-70℃）、超凈工作臺、培養箱(37℃)、分光光度計、移液器、槍頭、離心管、小三角瓶、6cm平皿、酒精燈、三角玻棒、酒精棉球、火柴
五、實驗步驟
感受態細胞制備：
1. 第一天：從大腸桿菌平板上挑取一個單菌落接于2 mL LB液體培養基的試管中，37℃振蕩培養過夜。
2. 第二天：取0.5 mL菌液轉接到一個含有50 mL LB液體培養基錐形瓶中，37℃振蕩培養。2-3 h，測定OD600 ≤ 0.4-0.5，細胞數務必 ≤108／mL。（此為實驗成功的關鍵)
3. 將菌液轉移到50 mL離心管中，冰上放置10 min。
4. 離心10 min，4000r/min，4℃，倒出培養液，將管倒置1min以便培養液流盡，回收細胞。
5. 用冰冷的0.1 mol/L CaCl2 10 mL懸浮沉淀，立即放在冰上30 min。
6. 4℃ 6000 r/min，離心10 min，回收細胞。
7. 用冰冷的0.1mol/L CaCl2 2 mL懸浮細胞，務必放在冰上。此細胞為感受態細胞。
8. 分裝，每管200 μL。可以加入15%甘油-70度保存。
轉化：
9. 取200 μL新鮮制備的感受態細胞，加入連接產物10μL（~50 ng ）混勻冰上放置30 min。
同時作2個對照管：
對照1：200 μL感受態細胞＋ 10μL無菌水（不含氨芐皿）每班做一個
對照2：200 μL 感受態細胞＋ 1μL 標準質粒DNA溶液（10ng/μL）每班做1-3個
10. 將管放到42℃循環水浴90-120sec。
11. 冰浴2 min。（提前準備好）
12. 每管加600 μL LB液體培養基，37℃培養1 h（慢搖）。
13. 將適當體積已轉化的感受態細胞，離心后涂在含有氨芐青霉素的培養皿中。（提前倒好平板）
注意：對照1涂不加氨芐的平皿，菌液不離心，取1-10μL涂；
對照2涂氨芐平皿，菌液不離心，取5-20μL涂。
14. 倒置平皿37℃培養12-16 h，出現菌落。
15. 計算陽性對照的轉化頻率。
16. 記錄樣品的轉化子總數。
六、注意事項
1. 無菌操作。
2. 低溫操作。
3．注意加Amp時的溫度，溫度不能過高（55-60度），否則抗生素失活，會使克隆株無法篩選出來。
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